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A vueltas con los Psammodromus…

Ya es casi una rutina el tener que revisar cada año la nomenclatura actualizada de los anfibios y reptiles de la Península Ibérica de cara a conocer qué nombres son los válidos y, por tanto, cuál poner en nuestras pruebas de “visu”, siempre con la prudencia de indicar entre paréntesis el nombre clásico, el más utilizado históricamente, como sinónimo del anterior.

El otro día, hablando de estos temas con mi amigo Jesús Dorda, salió el tema de los Psammodromus. Conocía la división de nuestra lagartija cenicienta (Psammodromus hispanicus) en tres especies diferentes: P. hispanicus, P. edwardsianus y P. occidentalis. Novedades publicadas en 2012 por, entre otros investigadores, el Prof. Zardoya del Museo Nacional de Ciencias Naturales (Fitze et al. 2011 y 2012).

Diferenciar P. edwardsianus de las otras dos especies es sencillo (San-José et al. 2012), ya que presenta una escama supralabial debajo de la subocular, ausente en las otras. La cosa se complica con P. hispanicus y P. occidentalis, diferenciables únicamente mediante estudios y análisis biométricos… lo dejamos a los expertos.

Psammodromus edwardsianus

Modificado de la siguiente fuente: https://www.flickr.com/photos/21913107@N04/8102508234

Sin embargo no tenía ni idea de lo que habían hecho con nuestra pobre lagartija colilarga (Psammodromus algirus), y eso que nos remontamos a una publicación de hace ya 10 años (Busak et al. 2006).

Busak y Lawson consideraron en ese trabajo que el aislamiento reproductivo entre las poblaciones de P. algirus a un lado y otro del estrecho de Gibraltar, era motivo suficiente para concluir que lo que había en la Península Ibérica tenía que ser otra especie a la clásica de Linneo. Pero tras estudiar las poblaciones ibéricas fueron aún más allá diferenciando dos linajes separados a su vez hace aproximadamente 1,5 Ma. Con todo, dichas poblaciones ibéricas debían corresponderse a dos especies diferentes y que ellos nominaron, respectivamente, como Psammodromus jeanneae y Psammodromus manuelae. Por cierto, ¿sabéis cómo se llaman las respectivas mujeres de Busak y Lawson? La respuesta no es complicada.

Estas dos especies son imposibles de diferenciar si no es con estudios biométricos. Podéis echar un vistazo al trabajo de Alfredo Salvador en la Enciclopedia Virtual de los vertebrados españoles (Salvador, 2009a y 2009b).

En cualquier caso, como apunta en un comentario Jesús Dorda, no entremos en pánico, ya que esas dos especies propuestas por Busak y Lawson no han sido aceptadas y no aparecen como tal en la última Lista patrón de los anfibios y reptiles de España (Actualizada a diciembre de 2014), por lo que se trata realmente de sinónimos de Psammodromus algirus.

Mi recomendación, de cara a nuestro visu, y dado que con toda probabilidad nuestros Tribunales no estarán al tanto de estos cotilleos familiares, es que sigamos utilizando los nombres clásicos para ambos grupos de especies, es decir, Psammodromus hispanicus y Psammodromus algirus hasta que la evidencia se haga suficientemente pesada como para cambiar el chip.

 

Referencias:

Busak, S.; Salvador, A. & Lawson, R. 2006. Two new species in the genus Psammodromus (Reptilia: Lacertidae) from the Iberian Peninsula. Annals of the Carnegie Museum, 75 (1): 1 – 10.

Fitze, P. S.; González-Jimena, V.; San-José, L. M.; San Mauro, D.; Aragón, P.; Suárez, T. & Zardoya, R. 2011. Integrative analyses of speciation and divergence in Psammodromus hispanicus (Squamata: Lacertidae). BMC Evolutionary Biology, 11: 347.

Fitze, P. S.; González-Jimena, V.; San-José, L. M.; San Mauro, D. & Zardoya, R. 2012. A new species of sand racer, Psammodromus (Squamata: Lacertidae), from the Western Iberian Peninsula. Zootaxa, 3205, 41-52.

Salvador, A. 2009a. Psammodromus manuelae, en la Enciclopedia Virtual de los Vertebrados Españoles. Salvador A. Martínez-Solano. I (Eds.). Museo Nacional de Ciencias Naturales, Madrid. [Consultado el 22/04/2016 en http://web.archive.org/web/http://www.vertebradosibericos.org/reptiles/pdf/psaman.pdf%5D

Salvador, A. 2009b. Psammodromus jeanneae, en la Enciclopedia Virtual de los Vertebrados Españoles. Salvador A. Martínez-Solano. I (Eds.). Museo Nacional de Ciencias Naturales, Madrid. [Consultado el 22/04/2016 en http://web.archive.org/web/http://www.vertebradosibericos.org/reptiles/pdf/psajea.pdf%5D

San-José, L.; González-Jimena, V.; Zardoya, R. & Fitze, P. S. 2012. Patterns of phenotypic variation reveal substantial differentiation in sexual dimorphism of three Psammodromus (Squamata, Lacertidae) species. Contributions to Zoology, 81, 181-197.

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Los “bolsos de sirena” en el visu…

De esta curiosa forma llaman algunos a las cápsulas de los huevos de diferentes especies de tiburones y rayas y que con cierta frecuencia se pueden encontrar en nuestras playas.

La especie de raya más frecuente en el visu es Raja clavata, si bien también han puesto cápsulas de Raja asterias (según lo indicado en los listados publicados posteriormente).

De tiburones únicamente tenemos que conocer las cápsulas de la pintarroja: Scyliorhinus canicula.

Ambas cápsulas son fácilmente diferenciables dando respuesta a esta sencilla clave:

  • Cápsulas con forma ovoidea, estrecha, y cuernecillos como zarcillos, largos y retorcidos, en ambos extremos: Scyliorhinus canicula.
  • Cápsulas con forma rectangular y cortos cuernecillos en ambos extremos, rectos o poco curvados: Raja clavata.
Cápsula de Scyliorhinus canicula con sus cuernecillos en forma de zarcillos (Autora: Marián Álvarez)

Cápsula de Scyliorhinus canicula con sus cuernecillos en forma de zarcillos (Autora: Marián Álvarez)

Cápsula de Raja clavata, de forma rectangular, ancha y con cuernecillos cortitos (Autor: Antonio Robledo).

Cápsula de Raja clavata, de forma rectangular, ancha y con cuernecillos cortitos (Autor: Antonio Robledo).

Obviamente diferenciar las cápsulas de las diferentes especies de Raja es trabajo de los expertos. Nuestra estrategia, como en muchos otros casos, va a estar basada en la probabilidad de que nos pongan una u otra especie, de forma que mi consejo es que si nos ponen una cápsula “tipo raya”, pondremos Raja clavata (en el peor de los casos tendremos medio punto). Si la cápsula es alargadita, estrecha, ovalada y con los cuernos largos y rizados, pondremos Scyliorhinus canicula.

Cápsulas de ambas especies (Raja clavata y Scyliorhinus canicula) donde se observan bien las diferencias (Autor: Jordi Clavell).

Cápsulas de ambas especies (Raja clavata y Scyliorhinus canicula) donde se observan bien las diferencias (Autor: Jordi Clavell).

¡Cuidado con las haches y las íes! Que las faltas de ortografía, aunque sea latín, también descuentan…

Cráneos de Canis lupus signatus y Vulpes vulpes

Estos días estamos a tope haciendo exámenes de visu en Palencia, Madrid, Talavera de la Reina, Valencia… y es más que probable que a alguno de vosotros os haya caído algún cráneo, entre los que suele ser bastante común el de zorro (Vulpes vulpes) y algo menos el de lobo (Canis lupus signatus).

Quizá tengas dificultades para diferenciarlos, pero estoy seguro de que después de leer este post y de ver la imagen que lo acompaña, se terminarán tus problemas al respecto.

Diferencias entre los cráneos de Vulpes vulpes y Canis lupus signatus:

  1. El tamaño: el cráneo de lobo es el doble de grande, de aspecto mucho más robusto (hablamos siempre de adultos, claro).
  2. El perfil dorsal en el zorro es prácticamente recto, en el lobo es curvado, cóncavo a la altura de las órbitas.
  3. En el zorro, los caninos superiores superan la mandíbula inferior, mientras que en el lobo esto no ocurre.
Comparativa entre un cráneo de Vulpes vulpes (izda.) y Canis lupus signatus (dcha.)

Comparativa entre un cráneo de Vulpes vulpes (izda.) y Canis lupus signatus (dcha.) (Fuente: colecciones zoológicas del Departamento de Biología Animal de la Universidad de Salamanca)

Prueba de “visu” de Castilla y León 2015 (Palencia)

Aunque se trata de una versión provisional, hemos elaborado el listado de la fauna que creemos que cayó en la prueba de visu celebrada el pasado sábado 20 de junio en Palencia:

Spongia officinalis (PORIFERA) FOTOS

Rumina decollata (MOLLUSCA, Gastropoda) FOTOS

Rumina decollata (Autor: Jordi Clavell)

Rumina decollata (Autor: Jordi Clavell)

Perla marginata (INSECTA, Plecoptera). Adulto, especie en la que tenemos dudas. FOTOS

Myrmeleon formicarius (INSECTA, Neuroptera) FOTOS

Oedipoda caerulescens (INSECTA, Orthoptera) FOTOS

Gonepteryx cleopatra (INSECTA, Lepidoptera). Macho. FOTOS

Melitaea phoebe (INSECTA, Lepidopotera). Especie en la que tenemos dudas. FOTOS

Dasypogon diadema (INSECTA, Diptera). Macho. FOTOS

Dasyopogon diadema (Autora: Fani Martínez)

Dasyopogon diadema (Autora: Fani Martínez)

Buthus occitanus (CHELICERATA, Arachnida) FOTOS

Buthus occitanus (Autor: Jordi Clavell)

Buthus occitanus (Autor: Jordi Clavell)

Carcinus maenas (CRUSTACEA, Decapoda) FOTOS

Spatangus purpureus (ECHINODERMATA, Echinoidea). Sólo el caparazón. FOTOS

Chalcides striatus (CHORDATA, Squamata) FOTOS

Capreolus capreolus (CHORDATA, Artiodactyla). Cuerna. FOTOS

Cuerna de Capreolus capreolus (Autor: Fermín Torres)

Cuerna de Capreolus capreolus (Autor: Fermín Torres)

Felis silvestris (CHORDATA, Carnivora). Cráneo de gato doméstico. FOTOS

Llama la atención la ausencia de aves y de coleópteros. En nuestra opinión ha sido un visu, en relación con la fauna, con una complicación media-alta, con especies clásicas como Spongia officinalis, Rumina decollata, Gonepteryx cleopatra, Buthus occitanus, Carcinus maenas o Chalcides striatus, mientras que otras especies han sido seleccionadas pensando en los mejor preparados: Dasypogon diadema, Melitaea phoebe (estos grupos de ninfálidos no son sencillos de conocer de visu) o el plecóptero Perla marginata, suponiendo que se tratase realmente de esta especie.

Conclusión: acertar 7 especies de 14 no era difícil, pero incrementar esta ratio parecía reservado para aquellos mejor preparados. Espero que éste sea vuestro caso.

¿Cómo identificar los huevos de las aves?

Es probable que en el “visu” nos pongan, entre otras cosas, huevos de aves para que indiquemos la especie de que se trata. Hasta ese punto llega la complicación y lo irracional de esta prueba, pero bueno.

Evidentemente hay tantos huevos como especies de aves, y algunos son tan parecidos entre sí que hasta los expertos tendrán dudas si no pueden estudiar morfométricamente toda una puesta de un mismo nido. Nosotros deberemos hacerlo a pelo, como siempre, solo mirando y sin tocar.

Dado que estamos preparando un examen, jugaremos en primer lugar con la probabilidad, de forma que lo primero que tenemos que hacer es una lista de las especies de aves cuyos huevos creemos que pueden ponernos en la prueba. Un buen comienzo sería elaborar una lista de las especies de aves más comunes de la Península Ibérica. Os podéis apoyar en este trabajo de SEO/Birdlife.

Ahora tendríamos que buscar fotografías de los huevos de cada una de esas especies, para lo cual recomiendo el estupendo trabajo realizado por dos voluntarios del Museum Wiesbaden, Klaus Rassinger y Gerhard Cammerer a cargo del Director del Departamento Fritz Geller-Grimm, fotografiando y subiendo el material en altísima calidad a Wikipedia bajo licencia de Creative Commons.

Lo realmente importante de esta colección no es sólo el gran número de especies que comprende y la calidad de las fotografías, sino que están realizadas con una referencia a escala, lo que nos va a permitir conocer las dimensiones reales de cada huevo.

Ahora necesitaremos agudizar el ingenio para organizar nuestra selección de huevos de forma que seamos capaces de aprenderla siguiendo algunos criterios básicos como:

  • Tamaño del huevo en relación con un tamaño conocido: el huevo de gallina o de codorniz.

Gallus gallus domesticus

  • Relación entre el eje mayor (L1) y eje menor (L2) para agrupar nuestros huevos en, por ejemplo, dos categorías: ovalados y estrechos.
Izda.: Athene noctua (L1/L2=1,2) Dcha.: Apus apus (L1/L2=1,6)

Izda.: Athene noctua (L1/L2=1,2) dcha.: Apus apus (L1/L2=1,6)

  • Color de fondo, pudiendo ser blanco puro o azul turquesa o ir de un amarillento a un marrón oscuro.
Prunella modularis

Color de fondo azul turquesa en Prunella modularis

  • Manchas del huevo: pueden no tener manchas o que esté poco manchado. La densidad, color y forma de las manchas también nos van a ayudar a agrupar huevos.
Pocas manchas bien definidas en Oriolus oriolus

Pocas manchas bien definidas en Oriolus oriolus

  • La posición del eje menor (L2) respecto al eje mayor (L1) nos va a permitir agruparlos en huevos más o menos simétricos (L2 se ubica más o menos a la mitad de L1) o huevos asimétricos (L2 se ubica dentro del tercio final de L1).
Vanellus vanellus (huevos asimétricos, amarillos y manchados). Streptopelia turtur (huevos simétricos, blancos y sin manchas)

Vanellus vanellus (huevos asimétricos, amarillos y manchados).
Streptopelia turtur (huevos simétricos, blancos y sin manchas)

Con todos estos caracteres seremos capaces de agrupar los huevos elaborando tablas de doble entrada como esta:

tabla resumen

O incluso elaborar nuestras propias claves dicotómicas para nuestra selección de huevos.

Más ejemplos:

Turdus merula

Turdus merula

Ciconia ciconia

Ciconia ciconia

Buteo buteo

Buteo buteo

Sobre los nombres correctos de anfibios y reptiles

Uno de los grandes problemas que tenemos los opositores a la hora de enfrentearnos al “visu” de fauna y flora son las sinonimias. No nos preocupa conocer el nombre más actualizado, la denominación correcta de una especie, sin embargo nos preocupa que sea el Tribunal el que no la conozca.

El caso de los anfibios y reptiles es paradójico ya que recientes estudios basados en técnicas moleculares están modificando profunda y constantemente la organización taxonómica de ambos grupos, y con ello la forma correcta de denominar un montón de especies.

Valga como ejemplo nuestro querido sapo corredor, cuya denominación pasó de la clásica Bufo calamita a Epidalea calamita para volver de nuevo a Bufo calamita. La pregunta que nos asalta es si el Tribunal daría por válidas ambas opciones o únicamente la correcta en el momento del examen, es decir, Bufo calamita.

Mi consejo al respecto es hacer un esfuerzo adicional y aprenderse los dos nombres, de forma que en examen pondríamos algo así como:

Bufo calamita (antes Epidalea calamita)

Bufo calamita (Autor: Jordi Clavell)

Bufo calamita (Autor: Jordi Clavell)

Considerando las especies más comunes que caen en el “visu” he elaborado unas tablas de equivalencias entre los nombres clásicos y los nombres correctos según los criterios de la Asociación Herpetológica Española, publicados en la Lista patrón de los anfibios y reptiles de España en diciembre de 2014.

lista patron 1

lista patron 2

(*) Lo que tradicionalmente se ha conocido como Podarcis hispanica está siendo objeto de una profunda revisión, aún sin concluir, cuyos resultados son el reconocimiento de varias especies diferentes, siendo estas de momento las siguientes: Podarcis liolepis, P. guadarramae y Podarcis virescens. Para nosotros considero lo más acertado seguir un criterio conservador y si nos ponen esta lagartija, asumirla a Podarcis hispanica.

Género Martes Pinel 1792

Dentro del orden de los carnívoros, una de las familias que más quebraderos de cabeza da a los no iniciados son los mustélidos, de forma que intentaremos arrojar algo de luz en una serie de entradas.

Esta primera, dedicada al género Martes, nos ayudará a diferenciar Martes martes (la marta) de Martes foina (la garduña).

Para ello tenemos que fijarnos, sobre todo y en primer lugar, en el “babero”:

Martes martes

Martes martes (Autor: Antonio Rodríguez)

Martes martes (Autor: Antonio Rodríguez)

  • Babero amarillento o anaranjado, sin dividirse en dos.
  • Hocico alargado.
  • Orejas prominentes con reborde claro.
  • Nariz o trufa negra.

Martes foina

  • Babero blanco, dividido en dos al alcanzar las patas delanteras.
  • Hocico achatado.
  • Orejas pequeñas.
  • Trufa rosada.
Martes foina (Autor: Rafael Fenoy)

Martes foina (Autor: Rafael Fenoy)